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植物RNA提取中常見(jiàn)的問(wèn)題是提取產(chǎn)物的總量少，RNA質(zhì)量差。植物的細(xì)胞中有很多代謝物，如蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、多糖和次生代謝物等。進(jìn)行RNA提取時(shí)，必須裂解細(xì)胞破壞植物膜釋放RNA，在裂解步驟中RNA不可避免會(huì)與這些代謝物混合。這些代謝物在結(jié)構(gòu)上與核酸相似，會(huì)發(fā)生共沉淀反應(yīng)，從而降低了RNA提取的產(chǎn)量和質(zhì)量。抽提足夠的高質(zhì)量植物RNA的難點(diǎn)就在于將RNA與這些代謝物進(jìn)行分離。

除了代謝物豐富以外，還有一些特性也會(huì)增加植物RNA的提取難度：

1、氧化多酚類(lèi)次級(jí)代謝物（如醌）可以與核酸發(fā)生不可逆的結(jié)合反應(yīng)，并成為后續(xù)反應(yīng)的抑制劑或降解RNA；

2、許多植物樣品存在一些固有特征，比如含有高水平RNases（會(huì)降解RNA）、由于高含水量導(dǎo)致RNA濃度很低，纖維組織（如木質(zhì)素）難以分解和移除等。

目前已經(jīng)發(fā)布了數(shù)以千計(jì)的植物RNA提取方案。但大多數(shù)都基于以下三種方法：

苯酚法：主要用于具有高濃度次生代謝物的植物。苯酚通常與氯仿結(jié)合以去除多糖污染物。

Trizol法：Trizol已被用于從特定組織（如擬南芥種子）中提取RNA。Trizol是一種市售試劑，可將苯酚和異硫氰酸胍結(jié)合在單一溶液中，以便在快速分離過(guò)程中產(chǎn)生高產(chǎn)量的RNA。在這種方法中，trizol與氯仿、異丙醇和乙醇在無(wú)RNase的水中混合以去除污染物。

CTAB法：十六烷基三甲基溴化銨或基于CTAB的方法已用于提取具有高多糖、二級(jí)產(chǎn)物或高水平RNase的植物樣品。CTAB提取緩沖液基本上由2%十六烷基三甲基溴化銨、1%聚乙烯吡咯烷酮（PVP）、100mM Tris-HCl、1.4M NaCl和20mM EDTA組成。這種方法首先去除多糖，然后是蛋白質(zhì)，最后是次級(jí)代謝物。該方法還可以添加濃度約為0.5%的十二烷基硫酸鈉（SDS）。SDS是一種去污劑，可與蛋白質(zhì)形成復(fù)合物，有助于在提取過(guò)程中去除蛋白質(zhì)污染物。

大多數(shù)RNA提取可分為四個(gè)步驟：

1、均質(zhì)化：組織可新鮮或冷凍獲取。當(dāng)沒(méi)有合適的實(shí)驗(yàn)室條件時(shí)（如從野外工作中收獲），樣品會(huì)在室溫下保存在高鹽溶液中，直到在實(shí)驗(yàn)室處理。使用新鮮或冷凍組織時(shí)，樣本準(zhǔn)備好后，通常將其放置在研缽中用研杵研磨成細(xì)粉（也可以使用帶有珠子的均質(zhì)器）。

2、裂解：組織變成粉末后，加入裂解液。在這種情況下，可以使用苯酚、Trizol或CTAB裂解細(xì)胞以釋放RNA，這一步驟很容易產(chǎn)生雜質(zhì)污染。這是因?yàn)楫?dāng)細(xì)胞膜破裂時(shí)，所有細(xì)胞內(nèi)容物會(huì)同時(shí)釋放，這意味著RNA與所有其他細(xì)胞成分結(jié)合，多糖和多酚等代謝物可以與RNA更緊密地接觸。同時(shí)，RNA酶也開(kāi)始發(fā)揮作用，增加了RNA降解的風(fēng)險(xiǎn)。有些提取試劑的作用類(lèi)似于RNA酶抑制劑，可以減少RNA完整度受損的可能。

3、清洗：使用不同的互補(bǔ)試劑去除雜質(zhì)，例如多糖、蛋白質(zhì)和次級(jí)代謝物等。氯仿和異丙醇等試劑分別用于去除多糖/次級(jí)代謝物和蛋白質(zhì)。此外，可以使用基于過(guò)濾柱或基于酶的方法去除污染的基因組DNA。

4、沉淀：純化和清洗抽提得到的RNA，進(jìn)一步去除雜質(zhì)，以便后續(xù)使用。70%的乙醇、0.1%（v/v）焦碳酸二乙酯（DEPC）處理的水或無(wú)DNase和無(wú)RNase的水都可以用來(lái)保存提取的RNA。最后，一旦RNA溶解在其中一種試劑中，必須在-80°C條件保存。

在此，我們從眾多提取方案中選擇了六種非常重要的試劑/操作方法，希望可以重點(diǎn)關(guān)注。

裂解液：用于破壞細(xì)胞膜并促使RNA釋放。通常是Trizol、苯酚或CTAB緩沖液。

氯仿：用于去除多糖。建議使用氯仿進(jìn)行兩次洗滌以獲得更好的結(jié)果。

異丙醇：去除蛋白質(zhì)

乙醇：沉淀。通常RNA在70%乙醇中沉淀。

不含RNase和DNase的水：用于RNA提取的所有步驟，也可以用DEPC處理的水代替。DEPC處理水是通過(guò)將一定體積的蒸餾滅菌水與DEPC試劑（0.1%v/v）混合來(lái)制備的。

RNase：像RNaseA這樣的RNA酶是一種嘧啶特異性酶，可在胞嘧啶和尿嘧啶殘基處降解單鏈RNA。

通常，有關(guān)RNA的研究旨在分析mRNA，因?yàn)樗幋a蛋白質(zhì)行使功能，是研究基因表達(dá)和調(diào)控的關(guān)鍵。但是，提取RNA時(shí)，會(huì)得到所有不同類(lèi)型的RNA混合物。

可以通過(guò)計(jì)算μgRNA/mg組織來(lái)對(duì)RNA產(chǎn)物進(jìn)行定量。然而，RNA定量是根據(jù)產(chǎn)物中占比最多的核糖體RNA進(jìn)行評(píng)估的，因此，mRNA是間接地通過(guò)凝膠上的rRNA估值計(jì)算的。

如何通過(guò)估值“間接測(cè)量RNA”？

植物中的核糖體由兩個(gè)亞基組成，較大的亞基稱(chēng)為28SrRNA，較小的亞基稱(chēng)為18SrRNA。當(dāng)這兩個(gè)亞基都存在于凝膠上時(shí)，表明RNA質(zhì)量很高。如果RNA降解，其中一條條帶可能看起來(lái)模糊不清，或者兩條條帶都不會(huì)出現(xiàn)。

NanoDrop分光光度計(jì)是一種用于驗(yàn)證獲得RNA的濃度和純度（或質(zhì)量）的儀器。為了評(píng)估提取的RNA的濃度和純度，研究人員會(huì)計(jì)算230nm、260nm和280nm處的吸光度比率。

如果RNA是純的，則260/280比率預(yù)計(jì)約為2。如果該比率明顯較低，則表明存在苯酚、蛋白質(zhì)或其他在280nm或附近強(qiáng)烈吸收的污染物。一般情況，260/230的比率，預(yù)計(jì)在2-2.2之間。如果該值相當(dāng)?shù)?，則表明存在雜質(zhì)（如：碳水化合物、EDTA、異硫氰酸胍和苯酚等）。低于預(yù)期的比率可能需要額外的清洗。

（1）把所有東西都放在冰上

為了抑制RNase活性，我們要確保RNA提取過(guò)程的每一步以及該過(guò)程中使用的所有工具都保持低溫。

（2）使用過(guò)濾移液器吸頭

使用非過(guò)濾移液器吸頭時(shí)，移液器筒的內(nèi)部可能是污染源，而過(guò)濾器吸頭可阻止顆粒物污染。

（3）戴手套

赤手是RNases的主要來(lái)源。在RNA提取時(shí)要始終戴手套并經(jīng)常更換。

（4）始終使用不含RNase/DNase的水。

可以購(gòu)買(mǎi)不含RNase/DNase的水，也可以使用DEPC制備的溶液，該溶液的作用是使RNase酶失活，避免RNA降解。

（5）其他清洗步驟

有時(shí)根據(jù)不同的植物種類(lèi)可能需要額外的清潔，例如，如果您的樣品含有大量多糖，則可以用氯仿清洗；若樣品含有大量蛋白質(zhì)污染物，則可以使用丙醇清洗。

（6）基因組污染

植物 RNA 提取的過(guò)程中，DNA 也會(huì)被釋放出來(lái)，因此基因組 DNA 的去除是影響 RNA 質(zhì)量的關(guān)鍵因素之一。

在使用瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè) RNA 質(zhì)量時(shí)，若存在 DNA 殘留，在 RNA 條帶上方、點(diǎn)樣孔下方會(huì)存在一條帶（如圖 1 所示）。DNA 殘留會(huì)對(duì)后續(xù)實(shí)驗(yàn)會(huì)造成一定的影響。

解決方法：

（1）柱提法：減少樣本起始投入量，或使用脫氧核糖核酸酶 Ⅰ 進(jìn)行膜上消化；

（2）細(xì)胞/組織總 RNA 提取法（Trizol 法）：向裂解液中加入氯仿后，需要在低溫下高速離心；向裂解液中加入氯仿后分層，吸取上清時(shí)避免吸到中間層和下層；

（3）若后續(xù)進(jìn)行 RT-qPCR 實(shí)驗(yàn)，逆轉(zhuǎn)錄時(shí)可選擇含有基因組清除模塊的產(chǎn)品。

（7）酚類(lèi)化合物

很多植物組織特別是植物果實(shí)和樹(shù)木類(lèi)植物中富含酚類(lèi)物質(zhì)，它的含量會(huì)隨植物的生長(zhǎng)而增加，且針葉類(lèi)植物的酚類(lèi)物質(zhì)含量要高于落葉類(lèi)植物。

純凈的酚為無(wú)色，但易氧化為紅色至褐色的氧化產(chǎn)物。在提取植物 RNA 進(jìn)行勻漿時(shí)，會(huì)產(chǎn)生「褐化效應(yīng)」，酚類(lèi)物質(zhì)會(huì)釋放出來(lái)，氧化后勻漿液變?yōu)楹稚?，并且隨著氧化程度的增加而加深。被氧化的酚類(lèi)化合物可與 RNA 穩(wěn)定的結(jié)合，從而影響 RNA 的分離純化。

解決方法：

（1）選擇幼嫩的組織作為實(shí)驗(yàn)的材料；

（2）在裂解樣品的同時(shí)加入合適的抗氧化劑。

（8）多糖物質(zhì)

多糖是一種高分子聚合物，常見(jiàn)的多糖包括淀粉、纖維素等。植物組織中通常富含多糖，如馬鈴薯塊莖、甘薯等。多糖的許多物理性質(zhì)和 RNA 相似，因此很難將其與 RNA 分開(kāi)。同時(shí)在沉淀 RNA 時(shí)，多糖還會(huì)產(chǎn)生膠狀沉淀，影響后續(xù)的操作。另外，多糖還會(huì)抑制后續(xù)實(shí)驗(yàn)的酶活性。

解決方法：

可通過(guò)鹽酸胍處理去除部分多糖；在高濃度 Na+ 或 K+ 條件下，可通過(guò)苯酚、氯仿除去部分多糖；此外還可以通過(guò) LiCl 沉淀 RNA，將多糖留在上清。但即使通過(guò)這些步驟也還會(huì)有很大一部分多糖與 RNA 分離不開(kāi)，還需要更多有效的解決辦法。

（9）蛋白質(zhì)

蛋白質(zhì)是影響 RNA 質(zhì)量的另一重要因素。細(xì)胞均含有大量的蛋白質(zhì)，同時(shí) RNase 也屬于蛋白質(zhì)，因而去除 RNA 中的蛋白質(zhì)在很大程度上會(huì)影響 RNA 的提取效果。

解決方法：

（1）冷凍條件下研磨植物材料抑制 RNase 活性；

（2）裂解液中添加合適的蛋白變性劑，如苯酚、胍、SDS、十六烷基三甲基溴化銨（CTAB）等；

（3）添加適量蛋白酶 K 以消化蛋白質(zhì)，再進(jìn)行進(jìn)一步的純化。

（10）次生代謝產(chǎn)物

次生代謝產(chǎn)物在植物對(duì)生態(tài)環(huán)境的適應(yīng)上有著重要作用，其是細(xì)胞生命活動(dòng)或植物生長(zhǎng)發(fā)育正常進(jìn)行的非必需小分子化合物，它的產(chǎn)生和分布通常有種屬、器官、組織以及生長(zhǎng)發(fā)育時(shí)期的特異性。

常見(jiàn)的次生代謝產(chǎn)物包括苯丙素類(lèi)、醌類(lèi)、黃酮類(lèi)、單寧類(lèi)、類(lèi)萜、生物堿等，這些次級(jí)代謝產(chǎn)物容易與 RNA 結(jié)合一起被抽提出，從而影響 RNA 的質(zhì)量。

解決方法：

次生代謝產(chǎn)物多種多樣，且很多成分尚未完全鑒定，因此還沒(méi)有非常完整的方法來(lái)去除這些代謝產(chǎn)物。目前可以使用選擇性沉淀法、氯化銫梯度離心法和 RNA 回收純化法等來(lái)分離純化植物組織 RNA。

除了關(guān)注上面干擾植物 RNA 提取的因素，RNA 提取實(shí)驗(yàn)作為各種分子生物學(xué)研究實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)，在實(shí)驗(yàn)操作中，大家往往還會(huì)關(guān)注的是以下兩點(diǎn)：

提取時(shí)長(zhǎng)：提取大量植物樣本時(shí)，事半功倍肯定是最理想的效果；

樣本兼容性：樣本涉及到簡(jiǎn)單植物、多糖多酚植物時(shí)，能做到兼容并包是不二選擇。

（11）柱純化試劑盒和Trizol的區(qū)別

目前常用的總RNA提取方法主要分為兩類(lèi)，一類(lèi)是基于核酸柱純化技術(shù)的試劑盒，一類(lèi)是經(jīng)典的溶劑提取法，以Trizol?為代表。

柱純化法的單價(jià)較高，但是提取過(guò)程相對(duì)簡(jiǎn)單，通常無(wú)需額外準(zhǔn)備有害的溶劑，無(wú)需低溫離心機(jī)，新手易操作，所得RNA的質(zhì)量非常高，但是樣品間的穩(wěn)定性稍差，尤其是價(jià)格低的試劑盒，比較容易出現(xiàn)吸附柱之間的效率差異甚至出現(xiàn)壞柱子，對(duì)非常珍貴的樣品來(lái)說(shuō)有一定的風(fēng)險(xiǎn)。

溶劑提取法試劑非常便宜，但是提取過(guò)程稍稍復(fù)雜一些，對(duì)移液的要求較高，需要低溫離心機(jī)，需要使用有害的氯仿等溶劑（Trizol試劑本身就是十分有害的），優(yōu)點(diǎn)是樣品間的一致性很高，并且一份植物材料可以同步提取基因組DNA和總蛋白，一箭三雕。

柱純化法和溶劑法最大的區(qū)別是對(duì)小RNA的提取效率不同。除非特別強(qiáng)調(diào)，一般的柱純化試劑盒對(duì)小RNA的提取效率遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于長(zhǎng)片段RNA，因此普通柱純化試劑盒通常只適合蛋白表達(dá)基因的分析（100 nt以上），不適合miRNA、snRNA、4.5S rRNA、5S rRNA等小RNA分析，但是沉淀法可以有效的提取小片段RNA，適用于所有長(zhǎng)度RNA的分析。根據(jù)實(shí)驗(yàn)室的經(jīng)費(fèi)和儀器情況，固定選擇一種提取方法并堅(jiān)持使用，兩種方法交替使用有可能對(duì)qRT-PCR的結(jié)果造成一定的波動(dòng)。

（12） 采樣時(shí)的注意點(diǎn)

RNA極易受到RNA酶的降解，基因表達(dá)對(duì)各種環(huán)境因素的變化高度敏感?；谝陨线@兩點(diǎn)，采樣時(shí)必須要快速、低溫，樣品間盡量保持操作一致，特別是對(duì)于需要轉(zhuǎn)錄組測(cè)序的樣品，需要格外注意。

任何微小的環(huán)境因素變化，包括光照、溫度、機(jī)械震動(dòng)、濕度等，都會(huì)導(dǎo)致某些基因的表達(dá)快速發(fā)生變化，有些基因表達(dá)響應(yīng)甚至快到幾分鐘、幾十秒以?xún)?nèi)。如果樣品較多，確保有足夠多的人手能夠同時(shí)收樣，植物材料離體后迅速用大量液氮凍透，保存在-80℃冰箱，如果需要長(zhǎng)期保存，最好添加RNA穩(wěn)定劑/保存劑。

（13）樣品研磨和分裝

充分的研磨是RNA產(chǎn)量和質(zhì)量的保證。確保整個(gè)研磨過(guò)程中植物材料從未過(guò)熱融化，所有研磨器材、器皿都用液氮時(shí)刻充分預(yù)冷，特別是分裝研磨好的粉末的時(shí)候，由于比表面積太大，極易潮解融化，大大增加了RNA降解的概率，一定要確保所有離心管和藥匙始終冷卻。

如果使用Trizol，可以按照試劑盒推薦的比例把試劑直接加到植物材料中研磨，這樣即使是室溫研磨RNA也不會(huì)發(fā)生明顯降解。

不管是使用柱純化試劑盒還是Trizol，想要確保RNA質(zhì)量高，最關(guān)鍵的一點(diǎn)是保證足夠的液料比（裂解液：植物材料質(zhì)量）。一般來(lái)說(shuō)柱純化試劑盒每個(gè)純化柱能夠處理的最大樣品鮮重在100毫克，Trizol法一般也控制在每毫升提取液最多100毫克鮮重（10:1）。

如果過(guò)于貪心，想用一個(gè)純化柱推薦的裂解液體積處理200毫克材料，結(jié)果一定是令人失望的。即便擬南芥是非常容易提取RNA的材料，5:1的液料比也不會(huì)有好結(jié)果。如果植物材料富含多糖多酚，還要進(jìn)一步提高液料比，20:1~40:1都是很常用的比例。

（14） 提取過(guò)程中的注意事項(xiàng)

對(duì)于柱純化，務(wù)必要確保每一步離心都要充分。有時(shí)因?yàn)槿芤禾^(guò)黏稠，離心不充分時(shí)溶液很難一下子全部通過(guò)過(guò)濾柱或者RNA吸附柱，因此要根據(jù)情況延長(zhǎng)離心的時(shí)間以及加大離心力。最后一步乙醇洗滌之后，一定要再次離心一到兩分鐘并開(kāi)蓋晾干幾分鐘徹底除去乙醇，以免影響下游反應(yīng)。

對(duì)于溶劑提取法，有兩個(gè)做法可以提高RNA的質(zhì)量。一是加氯仿之前，就要離心去除不溶的細(xì)胞碎片（有些品牌試劑的說(shuō)明書(shū)沒(méi)有特別強(qiáng)調(diào)這一步，反而出于節(jié)約時(shí)間的考慮建議直接向裂解液中加氯仿萃取然后離心），然后將上清吸出后再加氯仿萃取分層。這樣做可以提高色素和蛋白的萃取效率，提高RNA純度。

二是異丙醇沉淀RNA在室溫下進(jìn)行，總時(shí)間10分鐘。低溫下沉淀反而會(huì)使得某些雜質(zhì)與RNA共沉淀下來(lái)，室溫沉淀有利于提高純度。不用擔(dān)心RNA降解的問(wèn)題，RNA在異丙醇中非常穩(wěn)定。

（15）如何應(yīng)對(duì)RNA酶污染

對(duì)待RNA酶污染的態(tài)度，大抵分為兩類(lèi)，一類(lèi)是草木皆兵型，即便所有的器材都用高濃度DEPC處理好幾遍、采樣過(guò)程全程液氮低溫、磨樣品時(shí)液氮冷卻到手凍傷、提取過(guò)程全程戴口罩戴手套一句話也不說(shuō)，還是戰(zhàn)戰(zhàn)兢兢擔(dān)心RNA會(huì)降解，仿佛哪怕旁邊的人從他身邊走過(guò)都會(huì)帶來(lái)RNA酶污染。

另一類(lèi)是滿不在乎型，覺(jué)得自己什么器材都不處理，不戴口罩不用RNase滅活噴霧，全過(guò)程室溫，自己每次提出來(lái)的RNA用Nanodrop測(cè)參數(shù)也都很好。這兩種極端都不可取。嚴(yán)重的RNA酶污染并不是每次都會(huì)出現(xiàn)，甚至可以說(shuō)非常罕見(jiàn)，可能幾個(gè)月幾年都遇不到一次，但是輕度的RNA酶污染其實(shí)很常見(jiàn)，只不過(guò)如果只用Nanodrop檢測(cè)在吸光度上沒(méi)有明顯的跡象，需要通過(guò)瓊脂糖電泳或者毛細(xì)管電泳才能發(fā)現(xiàn)（RIN值下降）。

所以，RNA提取實(shí)驗(yàn)，對(duì)RNA酶最起碼的尊重還是要有的，器材一定要用無(wú)酶/除酶的，操作環(huán)境保持最基本的潔凈，DEPC處理一遍就可以了。但是也不至于提RNA時(shí)自己一句話也不說(shuō)，還不準(zhǔn)別人從周?chē)哌^(guò)。如果真的發(fā)生嚴(yán)重的系統(tǒng)性污染，RNA一直嚴(yán)重降解，通常要考慮提取試劑、DEPC水是不是被污染，以及移液器是否發(fā)生過(guò)嚴(yán)重倒吸導(dǎo)致整個(gè)內(nèi)部都被細(xì)菌污染。

（16）植物總RNA的特別之處

建議新手或者最近實(shí)驗(yàn)環(huán)境發(fā)生較大變化的時(shí)候一定要通過(guò)電泳檢測(cè)RNA的完整性，而不是只依賴(lài)于分光光度計(jì)。教科書(shū)上一般都寫(xiě)完整的RNA電泳時(shí)主要有三條帶，分別是28S、18S和5.8S三個(gè)核糖體RNA，28S rRNA的亮度大約是18S rRNA的兩倍。但是植物總RNA特別是光合組織的RNA與動(dòng)物細(xì)胞總RNA相比有明顯的區(qū)別，通常至少有6條帶，且最大條帶的沉降系數(shù)與人RNA往往不一樣，通常為25S（以擬南芥為例）。

其中25S、18S和5.8SrRNA是來(lái)自于細(xì)胞質(zhì)基質(zhì)的80S核糖體，所有標(biāo)記為綠色的23Sab、16S、5S和4.5S rRNA都來(lái)自于葉綠體70S核糖體。16S與18S對(duì)應(yīng)，23S與25S對(duì)應(yīng)，特別的，正常情況下葉綠體中的23S rRNA轉(zhuǎn)錄出全長(zhǎng)前體后會(huì)裂解成兩個(gè)分子，這也就是為什么在電泳圖中看不到25S和18S之間的23S RNA，只能看到兩條比16S更小的條帶。在某些突變體中可以看到未被剪切的23S rRNA前體。